Berberyna (berberine, BBR), alkaloid izochinolinowy, należy do naturalnie występującej klasy protoberberyn. Znajduje się w roślinach z rodziny Berberidaceae (berberysowate), Papaveraceae (makowate) i Ranunculaceae (jaskrowate), w tym Arcangelisia flava, Berberis vulgaris (berberys pospolity, berberys zwyczajny), B. aristata (berberys indyjski, kurkuma drzewna), B. lycium, B. crataegi, Mahonia aquifolium (mahonia pospolita, mahonia ostrolistna, ościał pospolity), Hydrastis canadensis (gorzknik kanadyjski) i Coptis chinensis (cynowód chiński). Zawartość BBR w liściach i korzeniu B. vulgaris wynosi 1,5–2%. Prawdopodobnie jest wchłaniana z przewodu pokarmowego, jednak jej biodostępność po podaniu doustnym jest niewielka. Przemiana w postać zjonizowaną zachodzi w warunkach fizjologicznych, a samoagregacja przy niskim pH. Badania wskazują, iż BBR jest przekształcana przez mikrobiotę jelitową do postaci dihydroberberyny, która cechuje się znacznie lepszą wchłanialnością. Dystrybucja tego alkaloidu odbywa się w wątrobie, nerkach, mięśniach, płucach, mózgu, sercu, trzustce oraz tkance tłuszczowej. W metabolizmie wątrobowym, przez oksydacyjną demetylację i glukuronidację, powstaje berberrubina, talalifendina, demetylenoberberyna i jatroryzyna oraz ich formy glukoronidowe. CYP2D6, CYP1A2, CYP3A4, CYP2E1 i CYP2C19 to główne cytochromy biorące udział w metabolizmie BBR. Jej metabolity są wydalane z kałem, moczem i żółcią. Prawdopodobnie BBR wchodzi w interakcje z metforminą (metformin, MET), ketokonazolem, digoksyną i cyklosporyną A, w związku z czym należy zachować szczególną ostrożność podczas jednoczesnego podawania tych preparatów. Kobiety w ciąży, karmiące piersią oraz małe dzieci powinny unikać jej stosowania. Toksyczność B. vulgaris i BBR zależy od eksperymentalnego gatunku zwierząt, dawki i sposobu podawania, a także źródła substancji. Ryzyko toksyczności po podaniu doustnym jest mniejsze niż iniekcja domięśniowa lub dootrzewnowa. Wyniki badań na zwierzętach i in vitro wykazały, że suplementacja BBR przypuszczalnie wywołuje zaburzenia i owrzodzenia przewodu pokarmowego, immuno-, foto-, neuro- oraz kardiotoksyczność w sposób zależny od dawki [1, 2].
Wzrastająca liczba dowodów naukowych sugeruje, iż BBR może się charakteryzować wielokierunkowym działaniem farmakologicznym, m.in. bakteriobójczym, przeciwzapalnym, hipoglikemicznym, hipotensyjnym, hipocholesterolemicznym, a nawet przeciwnowotworowym. Ponadto substancja ta wykazuje korzystny wpływ na insulinooporność (insulin resistance, IR), gospodarkę węglowodanową oraz metabolizm lipidów [1].
Korzystając z baz danych PubMed oraz Google Scholar z okresu 2010–2020 omówiono piśmiennictwo pod kątem potencjalnego wykorzystania BBR w przeciwdziałaniu IRi cukrzycy typu 2 (type 2 diabetes, T2D).
W licznych badaniach przedstawiano mechanizmy działania BBR na poziomie komórkowym, zwłaszcza w komórkach wątroby, adipocytach i miocytach. Wyniki wybranych badań in vitro zestawiono w tabeli 1.
Glukagonopodobny peptyd 1 (glucagon-like peptide-1, GLP-1) jest silnie zależnym od glukozy insulinotropowym hormonem uwalnianym z jelitowych komórek L. Wywiera istotny wpływ na regulację metabolizmu glukozy, stymulując wydzielanie insuliny, promując proliferację komórek beta, a także hamując uwalnianie glukagonu, opróżnianie żołądka oraz przyjmowanie pokarmu. Wyniki badania in vitro i in vivo wykazały, że BBR moduluje wydzielanie i biosyntezę GLP-1 częściowo przez regulację ekspresji genu proglukagonu i konwertazy prohormonu 3. W proces ten są zaangażowane również niektóre ścieżki sygnałowe, w tym szlak zależny od kinazy białkowej C. Wyjaśnienie mechanizmów kontrolujących wydzielanie GLP-1 za pośrednictwem BBR może ułatwić zrozumienie działania przeciwcukrzycowego tego alkaloidu [3]. Efekt hipoglikemiczny BBR występuje także wskutek zwiększenia ekspresji receptora insuliny (insulin receptor, InsR) w różnych liniach komórkowych [4]. Xing i wsp. wskazują, że BBR poprawia insulinowrażliwość w niealkoholowej stłuszczeniowej chorobie wątroby (non alcoholic fatty liver disease, NAFLD) prawdopodobnie przez regulację poziomu substratu receptora insuliny, podstawowej cząsteczki na szlaku sygnałowym insuliny. Wyniki tego badania sugerują, że BBR może mieć zastosowanie w NAFLD [5]. Dane pochodzące z innej pracy badawczej wskazują, że BBR poprawia profil glikemiczny przez bezpośrednie hamowanie glukoneogenezy w wątrobie, prawdopodobnie w wyniku inhibicji mitochondriów. Potwierdza to, że BBR polepsza metabolizm glukozy za pośrednictwem szlaku niezależnego od insuliny [6].
Udowodniono, że etanolowy ekstrakt z korzeni B. vulgaris i chlorek berberyny hamują aktywność alfa-glukozydazy wprost proporcjonalne do ich stężenia. Ponadto działanie było silniejsze dla B. vulgaris. BBR, jako potencjalny inhibitor alfa-glukozydazy, skutecznie opóźnia wchłanianie węglowodanów i hamuje poposiłkową hiperglikemię, co przyczynia się do lepszej kontroli T2D [ 7]. Podobne działanie, w hamowaniu aktywności alfa-amylazy, wykazano dla metanolowego ekstraktu B. vulgaris [8]. Stwierdzono także, że metanolowy ekstrakt z kory kurkumy (B. aristata) może hamować aktywność dipeptydylopeptydazy typu 4, zapobiegając inhibicji GLP-1, a tym samym BBR może być potencjalnym lekiem przeciwcukrzycowym [9].
Wyniki wybranych badań in vitro przedstawiające potencjalne działanie berberyny przeciwko cukrzycy i innym chorobom metabolicznym
| Autor | Rok | Rodzaj badanego materiału | Efekt BBR (p<0,05) | Piśmiennictwo |
|---|---|---|---|---|
| Yu i wsp. | 2010 | Ludzkie komórki NCI-H716 1 μM, 10 μM, i 100 μM BBR, 2h; 100 μM BBR, 24h | ↑ sekrecji GLP-1 ↑ ekspresji genu proglukagonu i PC3 | [3] |
| Zhang i wsp. | 2010 | CEM T-limfocyty, HCT-116 komórki raka okrężnicy, SW1990 komórki trzustki, HT1080 komórki włókniakomięsaka, 293T komórki fibro- blastów BBR (10 μg/mL), 12h | ↑ ekspresji InsR mRNA we wszystkich liniach komórkowych | [4] |
| Xing i wsp. | 2011 | Hepatocyty pochodzące od: Grupa kontrolna – zdrowe samce szczura Wistar (n=10) | ↓ zawartości TG w wątrobie ↓ stłuszczenia i stanu zapalnego w wątrobie | [5] |
| Szczury z NAFLD – BRR (187.5 mg/kg mc/d), 4 tygodnie (n=10) | ↑ ekspresji IRS-2 mRNA | |||
| Szczury z NAFLD – pioglitazon (10 mg/kg mc/d), 4 tygodnie (n=10) | ||||
| Szczury z NAFLD – sól fizjologiczna (3 ml/kg mc/d), 4 tygodnie (n=10) | ||||
| Xia i wsp. | 2011 | Hepatocyty pochodzące od zdrowych samców szczura Sprague- Dawley i szczurów z DM indukowaną STZ na HFD; BBR = 380 mg/kg mc/d , 5 tygodni (n=6) | ↓ ekspresji białka FoXO1, SREBP1 i ChREBP | [6] |
| ↓ ekspresji, PEPCK i G6P-azy | ||||
| ↓ FAS | ||||
| ↓ akumulacji lipidów w wątrobie | ||||
| Abd El- Wahab i wsp. | 2013 | Homogenat wątroby pochodzący od myszy Balb/c (n=6) Ekstrakt etanolowy z korzeni B. vulgaris i chlorek berberyny w stężeniach: 0.2, 0.4, 0.6, 0.8 i 1.0 mg/ml | ↓ aktywności α-glukozydazy (przy czym hamowanie wywołane przez ekstrakt B. vulgaris było ↑ niż hamowanie przez chlorek berberyny) | [7] |
| Boudjelthia i wsp. | 2017 | Metanolowy i wodny ekstrakt B. vulgaris o stężeniach: 1.6, 2.4, 3.2, 4.8 i 6.4 mg/ml | ↓ aktywności α-amylazy (przy czym hamowanie wywołane przez metanolowy ekstrakt było ↑ niż przez ekstrakt wodny) | [8] |
| Chakrabarti i wsp. | 2011 | DPP-4 pochodząca ze świńskiej nerki Metanolowy ekstrakt z kory B. aristata o stężeniach: 2.5, 40, 80 μg/ml | ↓ aktywności DPP-4 | [9] |
| Jiang i wsp. | 2015 | Tkanki wątroby pochodzące od samców szczurów Wistar: | ↑ ekspresji białka LKB1, AMPK, p- AMPK i p-TORC2 | [10] |
| Grupa kontrolna – zdrowe szczury (n=8) | ↓ ekspresji białka PEPCK i G-6-P | |||
| Szczury z DM indukowaną STZ (n=8) | ||||
| Szczury z DM indukowaną STZ + BBR (156 mg/kg mc/d), 12 tygodni (n=8) | ||||
| Szczury z DM indukowaną STZ + MET (184 mg/kg mc/d), 12 tygodni (n=8) | ||||
| Szczury z DM indukowaną STZ + AICAR (0.5 mg/kg mc/d), 12 tygodni (n=8) | ||||
| Furrianca i wsp. | 2017 | Ludzkie komórki wątroby HepG2 Ekstrakt z korzenia B. microphylla (10, 5, 2.5 i 1.25 x 10-3 μg/μL), 24h | ↑ wychwytu glukozy w komórkach HepG2 z i bez IR Aktywacja fosforylacji AMPK | [11] |
| BBR (0.25 x 10-3 μg/μL), 24h | ||||
| MET (0.25 x 10-3 μg/μL), 24h | ||||
| Xu i wsp. | 2014 | Ludzkie komórki raka wątroby HepG2 i mysi mioblast szkieletowy C2C12 | Hamowanie kompleksu I łańcucha oddechowego | [12] |
| BBR (5–40 μmol/L), 24h | ↓ syntezy ATP ↑ uwalnianie mleczanu i ↑ zużycia glukozy w sposób zależny od dawki | |||
| MET (1–10 μmol/L), 24h | ↑ fosforylacji AMPK i syntazy acetylokoenzymowej | |||
| Zhang i wsp. | 2018 | Pierwotne hepatocyty pochodzące od dorosłych myszy BBR (0, 5, 10 μM), 6-8 h | Hamowanie aktywności kompleksu I łańcucha oddechowego (dehydrogenazy NADH) | [13] |
| ↑ AMP poprzez hamowanie deacetylazy SIRT-3 | ||||
| ↑ wychwyt glukozy związany z AMPK inhibicja cyklazy adenylowej | ||||
| ↓ poziomu cAMP i aktywności PKA degradacja enzymu PEPCK1 blokowanie indukowanej glukagonem wątrobowej glukoneogenezy | ||||
| Liu i wsp. | 2018 | Hepatocyty, jelito cienkie | ↑ Bifidobacterium, Lactobacillus, | [14] |
| pochodzące od samców szczura Wistar | ↓ Escherichia coli, Enterococcus spp. w jelicie | |||
| Grupa kontrolna: zdrowe szczury na NCD (n=10) | ↓ TLR4, TNF-α w wątrobie | |||
| Otyłe szczury na HFD + BBR: 200 mg/kg mc/d, 8 tygodni (n=10) | ↑ InsR i IRS-1 mRNA w wątrobie | |||
| Otyłe szczury na HFD + woda destylowana, 8 tygodni (n=10) | ||||
| Zhong i wsp. | 2020 | Hepatocyty pochodzące od: | ↓ PEPCK, G6P-azy i PGC1α | [15] |
| Myszy ob/ob i myszy C57Bl/6J z DM indukowaną STZ | ↓ fosforylacji CREB u myszy ob/ob | |||
| ↓ podstawowej i indukowanej glu- | ||||
| BBR (0-10 μM) | kagonem produkcji glukozy | |||
| ↓ cAMP i bromo-cAMP | ||||
| ↓ fosforylacji CREB stymulowanej forskoliną | ||||
| Liu i wsp. | 2010 | Ludzkie komórki Caco-2 cells pochodzące od gruczolakoraka jelita grubego | ↓ aktywności disacharydaz (sacharazy i maltazy) | [16] |
| ↓ ekspresji kompleksu sacharazaizomaltazy mRNA | ||||
| BBR (2, 10, 50 μM), 5 dni | ||||
| Akarboza (50 μM), 5 dni | ||||
| Gong i wsp. | 2017 | Węzły chłonne/jelito cienkie pochodzące od: | ↓ liczby CD11b + CD68+ i % ↑ | [17] |
| Zdrowe szczury na normalnej diecie (0,5% karboksymetylocelulozy), | makrofagów w węzłach chłonnych | |||
| 9 tygodni (n=12) | krezkowych | |||
| %↑ liczby limfocytów T regulato- | ||||
| Samce szczura Wistar z DM indukowaną STZ na HFD (0,5% kar- | rowych (Treg) w węzłach chłonnych | |||
| boksymetylocelulozy), 9 tygodni (n=12) | krezkowych | |||
| Samce szczura Wistar z DM indukowaną STZ na HFD (BBR, 375 | ↓ ekspresji IL-1β, MIF i TNF-α mRNA | |||
| mg/kg mc/d), r-r BBR rozp. w wodzie zaw. 0,5% karboksymetyloce- | w jelicie | |||
| lulozy, | ↑ ekspresji IL-4 i IL-10 mRNA w jelicie | |||
| 9 tygodni (n=12) | ↑ ekspresji tzw. białek „tight junction” | |||
| (połączeń ścisłych) – OCLN i ZO-1 | ||||
| Samce szczura Wistar z DM indukowaną STZ na HFD (BBR, 187,5 | w jelicie | |||
| mg/kg mc/d), 9 tygodni (n=12) | ↓ ekspresji białka TLR4 i MyD88 | |||
| ↓ fosforylacji IKKβ (IKK2) | ||||
| Samce szczura Wistar z DM indukowaną STZ na HFD (BBR, 93,75 | ↓ LBP i CD14 mRNA w jelicie | |||
| mg/kg mc/d), 9 tygodni (n=12) | ||||
| Samce szczura Wistar z DM indukowaną STZ na HFD (MET, 184 mg/ | ||||
| kg mc/d), 9 tygodni (n=12) | ||||
| Zhang i wsp. | 2011 | Mięśnie szkieletowe pochodzące od samców myszy KKay na HFD | ↑ ekspresji genu GLUT-4, MAPK8, | [18] |
| z DM: | MAPK14, PPARα, UCP2 i HNF-4α | |||
| Grupa kontrolna – sól fizjologiczna (250 mg/kg mc/d), 4 tygodnie | ↓ ekspresji genu PPARγ, CCAAT/ | |||
| (n=8) | CEBP, PGC i rezystyny | |||
| Grupa z BBR (250 mg/kg mc/d), 4 tygodnie (n=8) | ||||
| Gomes i wsp. | 2012 | Mysi mioblast szkieletowy C2C12 | ↑ aktywności SDH, COX, ATPazy i syntazy cytrynianowej | [19] |
| BBR (różne parametry = różne dawki = różny czas ekspozycji na | ↑ włókien mięśniowych typu IIA | |||
| BBR) | (glikolityczno-tlenowych) | |||
| nieznaczne ↓ włókien mięśniowych | ||||
| typu IIB (glikolitycznych) | ||||
| ↑ wskaźnika NAD+/NADH | ||||
| Mi i wsp. | 2019 | Podwzgórze/przysadka/mięśnie szkieletowe pochodzące od samców | ↓ poziomu oreksyny-A, OX2R i CRH | [20] |
| szczura Sprague-Dawley: | w podwzgórzu | |||
| ↓ poziomu ACTH w przysadce | ||||
| Zdrowe szczury na normalnej diecie, 4 tygodnie (n=9) | mózgowej | |||
| ↑ ekspresji GLUT4 mRNA w | ||||
| Szczury z DM indukowaną STZ na HFD (0,5% karboksymetylocelu- | mięśniach szkieletowych | |||
| lozy, 50 mg/kg mc/d), 4 tygodnie (n=12) | ||||
| Szczury z DM indukowaną STZ na HFD (BBR, 200 mg/kg mc/d), 4 | ||||
| tygodnie (n=12) | ||||
| Szczury z DM indukowaną STZ na HFD (MET, 200 mg/kg mc/d), 4 | ||||
| tygodnie (n=12) | ||||
| Chen et al. | 2010 | Adipocyty 3T3-L1 i miocyty L6 pochodzące od myszy db/db | ↑ zdolności wychwytu glukozy przez | [21] |
| BBR (różne parametry = różne dawki = różny czas ekspozycji na | adipocyty 3T3-L1 i miocyty L6 | |||
| BBR) | ↓ aktywności PTP1B w adipocytach | |||
| 3T3-L1 | ||||
| ↑ fosforylacji InsR, IRS1 i PKB w | ||||
| adipocytach 3T3-L1 | ||||
| Yang et al. | 2012 | Preadipocyty pochodzące z tkanki tłuszczowej sieciowej (kompo- | ↓ różnicowania preadipocytów | [22] |
| nenta trzewnej tkanki tłuszczowej) pacjentów z MS (n=9) | ↓ ekspresji PPARγ2, lipazy lipopro- | |||
| BBR (0, 0.1, 1, 10 μM) | teinowej, C/EBPα, adiponektyny i | |||
| leptyny mRNA | ||||
| ↓ sekrecji leptyny i adiponektyny pod- | ||||
| czas różnicowania preadipocytów | ||||
| Chang et al. | 2013 | Komórki kardiomiocytów H9c2 pochodzące od szczurów z i bez IR | ↑ podstawowego i stymulowanego | [23] |
| BBR (5–20 μM); 24 h | insuliną zużycia glukozy w komórkach | |||
| H9c2 z IR | ||||
| aktywacja AMPK | ||||
| ↑ wskaźnika p-AMPK/AMPK | ||||
ACTH – hormon adrenokortykotropowy/kortykotropina (adrenocorticotropic hormone, corticotropin), AICAR – 5-aminoimidazolo-4-karboksyamid 1-β-D-rybofuranozyd (5-aminoimidazole-4-carboxamide 1- β-D-ribofuranoside), AMP – adenozyno-5′-monofosforan (adenosine monophosphate), AMPK – kinaza aktywowana 5’AMP (5›AMP-activated protein kinase), ATP – adenozyno-5′-trifosforan (adenosine triphosphate), BBR – berberyna (berberine), cAMP – cykliczny adenozyno-3′,5′-monofosforan (3’,5’- cyclic adenosine monophosphate), CCAAT/ CEBP – białko wiążące się z sekwencja CCAAT (CCAAT enhancer binding protein), CD – antygen różnicowania komórkowego, kompleks różnicowania (cluster of differentiation), ChREBP – białko wiążące sekwencję odpowiedzi na węglowodany (carbohydrate-responsive element-binding protein), COX – oksydaza cytochromu C (cytochrome C oxidase), CREB – białko wiążące element odpowiedzi na cAMP (cAMP response element-binding protein), CRH – hormon uwalniający kortykotropinę, kortykoliberyna, (corticotropin-releasing hormone, corticoliberin), DM – cukrzyca (diabetes mellitus), DPP-4 – dipeptydylopeptyza 4 (dipeptidyl peptidase 4), FAS – syntaza kwasów tłuszczowych (fatty acid synthase), FOXO1 – czynnik transkrypcyjny uczestniczący w regulacji glukoneogenezy i glikogenolizy oraz adipogenezy (forkhead box protein O1), GLP-1 – glukagonopodobny peptyd 1 (glucagon-like peptide-1), GLUT – transporter glukozy (glucose transporter), G6P – glukozo-6-fosforan (glucose-6-phosphate), HFD – dieta wysokotłuszczowa (high fat diet), HNF-4α – wątrobowy czynnik jądrowy 4α (hepatic nuclear factor 4α), IKKβ (IKK2) – kinaza IκB (IκB kinase β), IL – interleukina (interleukin), InsR – receptor insuliny (insulin receptor), IR – insulinooporność (insulin restistance), IRS – substrat receptora insuliny (insulin receptor substrate), LBP – białko wiążące lipopolisacharyd (lipopolysaccharide binding protein), LKB1 – kinaza wątrobowa B1 (liver kinase B1), MAPK – kinaza białkowa aktywowane mitogenami (mitogen-activated protein kinase), MET – metformina (metformin), MIF – czynnik hamujący migrację makrofagów (macrophage migration inhibitory factor), mRNA – matrycowy RNA, rodzaj kwasu rybonukleinowego (messenger RNA), MS – zespół metaboliczny (metabolic syndrome), MyD88 – gen 88 pierwotnej odpowiedzi różnicowania szpiku (myeloid differentiation primary response gene 88), NADH – dinukleotyd nikotynoamidoadeninowy, forma zredukowana (nicotinamide adenine dinucleotide), NAD+ – dinukleotyd nikotynoamidoadeninowy, forma utleniona, NCD – zwyczajowa dieta (normal chow diet), OCLN – okludyna (occludin OX2R – receptor oreksyny typu 2 (orexin receptor type 2), p-AMPK – fosforylowana AMPK (phosphorylated AMPK), PC3 – konwertaza prohormonu 3 (prohormone convertase 3), PEPCK – larboksykinaza fosfoenolopirogronianowa (phosphoenolpyruvate carboxykinase); PGC1α – koaktywator PPAR1α (PPARγ coactivator 1α), PKA – kinaza bialkowa A (protein kinase A), PKB – kinaza białkowa B (protein kinase B), PPAR – receptory aktywowane przez proliferatory peroksysomów (peroxisome proliferator-activated receptor), p-TORC2 – fosforylowany współczynnik transkrypcji regulowany przez CREB (phophorylated CREB regulated transcription coactivator 2), PTP-1B – białkowa fosfataza tyrozynowa (protein tyrosine phosphatase), SDH – dehydrogenaza bursztynianowa (succinate dehydrogenase), SIRT – sirtuiny (sirtuins), SREBP – białko wiążące sterolowy element regulatorowy (sterol regulatory element-binding protein), STZ – streptozotocyna (streptozotocin), TG – triglicerydy (triglycerides), TLR4 – receptor Toll-podobny typu 4 (Toll-like receptor-4), TNF-α – czynnik martwicy nowotworu (tumor necrosis factor), UCP2 – rozprzęgacz protonów (uncoupling protein 2), ZO-1 – białko połączeń ścisłych (zonula occludens-1, tight junction protein-1).
Kinaza aktywowana 5’AMP (5’AMP-activated protein kinase, AMPK) jest bardzo oszczędnym czujnikiem stanu energii komórkowej, który występuje u prawie wszystkich eukariontów. Po aktywacji AMPK promuje procesy kataboliczne (glikoliza, utlenianie kwasów tłuszczowych itp.), jednocześnie wyłączając szlak anaboliczny (synteza glikogenu, cholesterolu i białka itp.). Ekstrakt z korzenia B. mycrophylla ma działanie hipoglikemiczne i stymuluje wychwyt glukozy w komórkach HepG2 z i bez IR przez stymulację białka AMPK. W związku z tym uważa się, że aktywacja AMPK odpowiada za mechanizm działania BBR [11]. Ponadto BBR i MET promują metabolizm glukozy przez stymulowanie glikolizy – prawdopodobnie w wyniku hamowania mitochondrialnego kompleksu I łańcucha oddechowego w komórkach wątrobowych i mięśniowych, niezależnie od aktywacji AMPK [12].
Przez hamowanie deacetylazy sirtuiny BBR promuje wychwyt glukozy i hamuje glukoneogenezę oraz prowadzi do dysfunkcji mitochondriów i kumulacji adenozyno-5′-monofosforanu (adenosine monophosphate, AMP) w hepatocytach myszy. Regulacja szlaków związanych z mitochondriami może być nowym podejściem do opracowywania leków przeciwcukrzycowych [24].
Badania sugerują, iż BBR może zmniejszać IR, częściowo także przez modulowanie mikrobioty jelitowej wraz z hamowaniem sygnalizacji lipopolisacharyd (lipopolysaccharides, LPS) Toll-podobny receptor typu 4/ czynnik martwicy nowotworu α w wątrobie [14]. Zhong i wsp. wykazali, że BBR zmniejsza hiperglikemię przez hamowanie wątrobowego szlaku glukagonu u myszy z T2D [15]. Przypuszcza się, że hipoglikemiczne działanie BBR jest związane z poprawą funkcjonowania hormonów jelitowych oraz zmniejszeniem mechanicznych uszkodzeń błony śluzowej jelit i bariery immunologicznej [17]. BBR wpływa hamująco na oś podwzgórze–przysadka– nadnercza i zwiększa ekspresję białek – transporterów glukozy (glucose transporter 4,GLUT-4) w mięśniach szkieletowych samców szczura Sprague-Dawley. Może to być jednym z mechanizmów działania BBR w celu poprawy insulinowrażliwości oraz regulacji metabolizmu glukozy i lipidów w T2D [20].
Na podstawie badań Chen i wsp. dowiedli, że BBR naśladuje działanie insuliny przez wzrost zdolności do pobierania glukozy przez adipocyty 3T3-L1 i miocyty L6 w sposób niezależny od insuliny, hamując aktywność fosfatazy białkowo-tyrozynowej 1B, a zwiększając fosforylację InsR, substratu receptora insuliny i kinazy białkowej B w adipocytach 3T3-L1 [21].
Wyniki badania Chang i wsp. sugerują, że BBR poprawia insulinowrażliwość w komórkach kardiomiocytów częściowo przez stymulację aktywności AMPK [23].
Ekstrakty z gatunków Berberis i ich składniki, zwłaszcza alkaloidy, zostały przebadane pod kątem potencjalnego wpływu na gospodarkę węglowodanową na modelach zwierzęcych in vivo. Wyniki wybranych badań przestawiono w tabeli 2.
Wykazano korzystny wpływ BBR na homeostazę glukozy i markery IR u samców szczurów Wistar z cukrzycą indukowaną streptozotocyną (streptozotocin, STZ) [25]. BBR znacznie poprawia funkcję mitochondriów w zwierzęcych i komórkowych modelach IR oraz T2D. Dane te wskazują także na rolę sirtuiny-1 i biogenezy mitochondriów w profilaktycznym działaniu BBR na IR indukowaną dietą [19]. Ponadto BBR moderuje metabolizm glukozy i lipidów poprzez mechanizm wielościeżkowy, który obejmuje szklaki, takie jak: AMPK-p38 MAPK (kinaza białkowa aktywowana mitogenami, mitogen-activated protein kinase) –GLUT-4, N-końcowe kinazy c-Jun/ kinazy aktywowane stresem oraz receptory aktywowane przez proliferatory peroksysomów α [18]. Mechanizmy odpowiedzialne za wyniki leczenia BBR mogą być związane z hamowaniem glukoneogenezy poprzez szlak sygnałowy kinazy wątrobowej B1 – współczynnika transkrypcji regulowanego przez CREB (CREB regulated transcription coactivator, TOCR2) [10]. Dowody z badań in vivo i in vitro wskazują, że BBR tłumi aktywność disacharydaz i ekspresję mRNA kompleksu sacharaza-izomaltaza z korzystnymi wynikami metabolicznymi w stanach cukrzycowych. Działanie hamujące, przynajmniej częściowo, obejmuje szlak zależny od kinazy białkowej A [16]. Wykazano, że zastosowanie stałych nanocząsteczek lipidowych w celu zwiększenia absorpcji i biodostępności BBR, a osłabienia potencjalnych działań niepożądanych, wzmacnia również jej działanie przeciwcukrzycowe [26]. Równie korzystne wydaje się połączenie BBR z oligomerycznymi proantocyjanidynami, które należą do związków o silnych właściwościach przeciwutleniających. Kombinacja taka znacznie poprawia wchłanianie jelitowe i skuteczność hipoglikemicznej BBR [13]. Badacze dowiedli również, że BBR chroni przed kwasicą mleczanową związaną z leczeniem MET u szczurów z cukrzycą indukowaną STZ. Zaobserwowano również poprawę insulinowrażliwości i enzymów wątrobowych [27].
Istnieje niewiele badań oceniających zastosowanie BBR wśród ludzi. Badania pilotażowe, przedkliniczne i kliniczne, sugerują korzystne działanie wyciągów Berberis i izolowanych związków na T2D i inne choroby metaboliczne, co przedstawiono w tabeli 3.
Wyniki wybranych badań in vivo przedstawiające potencjalne działanie berberyny przeciwko cukrzycy i innym chorobom metabolicznym
| Autor | Rok | Badana grupa | Dawka substancji oraz liczba zwierząt | Czas leczenia | Efekt (p<0,05) | Piśmiennictwo |
|---|---|---|---|---|---|---|
| Yu i wsp. | 2010 | Zdrowe samce | Grupa kontrolna – placebo | 5 tygodni | ↓ stężenia glukozy na czczo | [3] |
| szczura Sprague–Dawley | ↓ pobierania pokarmu | |||||
| BBR 60 mg/kg mc/d | ↑ wydzielania GLP-1 indukowane- | |||||
| go obciążeniem glukozą | ||||||
| BBR 120 mg/kg mc/d | ↑ ekspresję mRNA proglukagonu | |||||
| w jelicie krętym w sposób zależny | ||||||
| od dawki | ||||||
| ↑ proliferacji komórek L w jelicie | ||||||
| Chen i wsp. | 2011 | Samce szczura Wistar | Szczury z DM indukowaną STZ; BBR 100 mg | 7 tygodni | ↓ stężenia glukozy na czczo i w | [25] |
| mc/kg/d chlorek berberyny rozp. w wodzie | OGTT | |||||
| zaw. 0,5% karboksymetylocelulozy (n=7) | ↓ CRP | |||||
| Hamowanie aktywności DPP-4 i | ||||||
| Szczury z DM wywołaną STZ; 0,5% karboksy- | PTP-1B przez BBR | |||||
| metylocelulozy (n=8) | ||||||
| Grupa kontrolna – zdrowe szczury: 0,5% | ||||||
| karboksy-metylocelulozy (n=10) | ||||||
| Gomes i wsp. | 2012 | Samce szczura Sprague Dawley | Standardowa dieta, 12 tygodni | 4 tygodnie | ↓ masy ciała ogółem, FFM i FM | [19] |
| ↓ stężenia insuliny na czczo | ||||||
| HFD, 12 tygodni | ↓ stężenia leptyny | |||||
| ↑ stężenia adiponektyny | ||||||
| HFD + BBR (100 mg/kg mc/d), 4 tygodnie | ↓ wskaźnika leptyna/adiponektyna | |||||
| Zhang i wsp. | 2011 | Otyłe samce | Grupa kontrolna – sól fizjologiczna: 250 mg/ | 4 tygodnie | ↓ stężenia glukozy i insuliny na | [18] |
| myszy KKay z DM | kg mc/d (n=8) | czczo | ||||
| na HFD | ↓ stężenia glukozy w OGTT | |||||
| BBR: 250 mg/kg mc/d (n=8) | ↓ HOMA-IR | |||||
| Jiang i wsp. | 2015 | Samce szczura Wistar | Grupa kontrolna – zdrowe szczury (n=8) | 12 tygodni | ↓ stężenia glukozy w OGTT | [10] |
| ↓ stężenia insuliny na czczo | ||||||
| Szczury z DM indukowaną STZ (n=8) | ↓ HOMA-IR | |||||
| Szczury z DM indukowaną STZ + BBR (156 | ||||||
| mg/kg mc/d), 12 tygodni (n=8) | ||||||
| Szczury z DM indukowaną STZ + MET (184 | ||||||
| mg/kg mc/d), 12 tygodni (n=8) | ||||||
| Szczury z DM indukowaną STZ + AICAR (0.5 | ||||||
| mg/kg mc/d), 12 tygodni (n=8) | ||||||
| Liu i wsp. | 2010 | Samce szczura Sprague Dawley | Szczury z DM indukowaną STZ – placebo, 5 | 5 tygodni | ↓ aktywności disacharydaz w | [16] |
| tygodni (n=6) | jelicie | |||||
| ↓ ekspresji kompleksu sacharaza- | ||||||
| Szczury z DM indukowaną STZ + BBR (100 | izomaltaza mRNA w jelicie | |||||
| mg/kg mc/d), 5 tygodni (n=6) | ↓ przyjmowania pokarmu | |||||
| ↓ masy ciała | ||||||
| Szczury z DM indukowaną STZ + BBR (200 | ↓ stężenia glukozy i insuliny na | |||||
| mg/kg mc/d), 5 tygodni | czczo ↓ poposiłkowego stężenia glukozy | |||||
| Szczury z DM indukowaną STZ + Akarboza | we krwi po doustnym podaniu | |||||
| (40 mg/kg mc/2x/d), 5 tygodni (n=6) | sacharozy lub maltozy | |||||
| Zdrowe szczury + placebo, 5 tygodni (n=6) | ||||||
| Zdrowe szczury + BBR (100 mg/kg mc/d), 5 | ||||||
| tygodni (n=6) | ||||||
| Zdrowe szczury + BBR (200 mg/kg mc/d), 5 | ||||||
| tygodni | ||||||
| Zdrowe szczury + Akarboza (40 mg/kg | ||||||
| mc/2x/d), 5 tygodni (n=6) | ||||||
| Xue i wsp. | 2013 | Samce myszy db/db z DM | Grupa kontrolna: sól fizjologiczna (n=10) | 4 tygodnie | ↓ stężenia glukozy i insuliny na czczo | [26] |
| BBR: 100 mg/kg mc/d (n=10) | ↓ HOMA-IR | |||||
| ↓ stężenia glukozy w IPGTT | ||||||
| BBR-SLNs: 50 mg mc/kg mc/d (n=10) | ↓ stężenia insuliny w IPITT | |||||
| BBR-SLNs :100 mg/kg mc/d (n=10) | ||||||
| Zhang i wsp. | 2018 | Samce myszy db/db z DM | Grupa kontrolna: 0,9% soli fizjologicznej (n=10) | 4 tygodnie | ↓ stężenia glukozy na czczo | [13] |
| ↓ stężenia glukozy w OGTT | ||||||
| ↓ stężenia insuliny w IPITT | ||||||
| BBR: 200 mg/kg mc/d rozp. w 0,5% r-r kar- | ||||||
| boksymetylocelulozy sodowej (n=10) | ||||||
| BBR: 200 mg/kg mc/d + OPCs: 60 mg/kg mc/d (n=10) | ||||||
| MET: 150 mg/kg mc/d (n=10) | ||||||
| Almani et al. | 2017 | Samce szczura Wistar | Grupa kontrolna- zdrowe szczury: 0,9% soli fizjologicznej (n=10) | 28 dni | ↓ stężenia glukozy i insuliny na czczo | [27] |
| Szczury z DM indukowaną STZ (n=15) | ↓ HbA1c | |||||
| Szczury z DM – MET: 100 mg/kg mc/2x/d | ↓ HOMA-IR | |||||
| (n=15) | ||||||
| Szczury z DM- MET: 100 mg/kg/2x/d + BBR: | ||||||
| 50 mg/kg mc/2x/d (n=15) | ||||||
| Szczury z DM- MET: 100 mg/kg/2x/d + BBR: | ||||||
| 100 mg/kg mc/2x/d (n=15) | ||||||
AICAR – 5-aminoimidazolo-4-karboksyamid 1-β-D-rybofuranozyd (5-aminoimidazole-4-carboxamide 1- β-D-ribofuranoside), BBR – berberyna (berberine), CRP – białko C-reaktywne (C-reactive protein), DM – cukrzyca (diabetes mellitus), DPP-4 – dipeptydylopeptyza 4 (dipeptidyl peptidase 4), HbA1c – hemoglobina glikowana A1c (glycated hemoglobin, hemoglobin A1c), FFM – beztłuszczowa masa ciała (free fat mass), FM – masa tkanki tłuszczowej (fat mass), HFD – dieta wysokotłuszczowa (high fat diet), IPGTT – dootrzewnowy test tolerancji glukozy (intraperitoneal glucose tolerance test), IPITT – dootrzewnowy test tolerancji insuliny (intraperitoneal insulin tolerance test), MET – metformina (metformin), mRNA – matrycowy RNA, rodzaj kwasu rybonukleinowego (messenger RNA), OGTT – doustny test obciążenia glukozą (oral glucose tolerance test), OPCs – oligomeryczne proantocyjanidyny (oligomeric proanthocyanidins), PTP-1B – białkowa fosfataza tyrozynowa (protein tyrosine phosphatase), SLNs – stałe nanocząsteczki lipidowe (solid lipid nanoparticles), STZ – streptozotocyna (streptozotocin)
Wyniki wybranych badań klinicznych przedstawiające potencjalne działanie berberyny przeciwko cukrzycy i innym chorobom metabolicznym
| Autor | Rok | Badana grupa | Liczba pacjentów oraz dawka substancji | Czas leczenia | Efekt (p<0,05) | Piśmiennictwo |
|---|---|---|---|---|---|---|
| Yang i wsp. | 2012 | Pacjenci z MS | BBR; 0,3 g 3x/d (n=37) | 3 miesiące | ↓ BMI | [22] |
| ↓ obwodu talii | ||||||
| ↓ TG | ||||||
| ↓ stężenia glukozy i insuliny na czczo | ||||||
| ↓ HOMA-IR | ||||||
| ↓ HbA1c | ||||||
| ↓ leptyny | ||||||
| ↓ wskaźnika leptyna/adiponektyna | ||||||
| Perez-Rubio i wsp. | 2013 | Pacjenci z MS | BBR 0,5 g 3x/d (n=12) | 3 miesiące | ↓ BMI | [28] |
| ↓ obwodu talii | ||||||
| placebo (n=12) | ↓ stężenia glukozy na czczo | |||||
| ↓ AUC glukozy | ||||||
| ↓ AUC insuliny | ||||||
| ↓ insulinogenic index | ||||||
| ↑ wskaźnika Matsudy | ||||||
| Chen i wsp. | 2016 | Pacjenci z T2D | BBR: 0,3 g/3x/d (n=30) | 8 tygodni | ↓ BMI | [29] |
| ↓ stężenia glukozy i insuliny na czczo | ||||||
| ↓ HbA1c | ||||||
| ↓ ekspresji TNF-α, CRP i LPS, | ||||||
| ↑ Bifidobacterium ogółem, B. longum, B. | ||||||
| breve, B. adolescentis w kale | ||||||
| Memon i wsp. | 2018 | Pacjenci z T2D | BBR; 0,5 g 3x/d (n=100) | 3 miesiące | ↓ masy ciała | [30] |
| ↓ stężenia glukozy i insuliny na czczo | ||||||
| MET; 0,5 g 3x/d (n=100) | ↓ HbA1c | |||||
| ↓ HOMA-IR | ||||||
| ↓ stężenia metyloglioksalu | ||||||
| Sheng i Xie | 2010 | Pacjenci z T2D | BBR: 0,5 g 3x/d + MET: 0,5 g 3x/d + | 3 | ↓ stężenia glukozy na czczo | [31] |
| glipizyd: 5 mg 2x/d (n=30) | miesiące | ↓ HOMA-IR | ||||
| ↓ TNF-α | ||||||
| MET: 0,5 g 3x/d + glipizyd: 5 mg 2x/d | ↓ IL-6 | |||||
| (n=30) | ↓ CRP | |||||
| Zhang i wsp. | 2010 | Pacjenci z T2D | BBR: 0,5 g/2x/d (n=50) | 2 miesiące | ↓ stężenia glukozy i insuliny na czczo | [4] |
| ↓ HbA1c | ||||||
| MET: 0,75 g/2x/d (n=26) | ||||||
| Rozyglitazon: 4 mg/d (n=21) | ||||||
| Pacjenci z T2D/ IFG | ||||||
| i WZWB/WZWC | BBR: 1g/d (n=35) | ↓ stężenia glukozy na czczo | ||||
| Cao i Su | 2019 | Pacjenci z MS | BBR 4 tabl. 3x/d (n=40) | 1 | ↓ stężenia glukozy na czczo | [32] |
| miesiąc | ↓ poposiłkowego stężenia glukozy | |||||
| Tradycyjna farmakoterapia MS (n=40) | ↓ HOMA-IR | |||||
| ↓ hs-CRP | ||||||
| ↓ IL-6 | ||||||
| ↓ TNF-α | ||||||
| Shidfar i wsp. | 2012 | Pacjenci z T2D | Ekstrakt z owoców Berberis vul- | 3 | ↓ stężenia glukozy i insuliny na czczo | [33] |
| garis (BBR); 3 g– 0,5 g 3x/d (n=21) | miesiące | ↓ HOMA-IR | ||||
| Placebo – laktoza (n=21) | ||||||
| Di Pierro i wsp. | 2012 | Pacjenci z T2D | Berberol® (Berberis aristata, berberys | 6 | ↓ HbA1c | [34] |
| indyjski – 0,5 g BBR oraz Sylibum | miesięcy | ↓ stężenia insuliny na czczo | ||||
| marianum, sylimaryna – 105 mg) 2x/d | ↓ HOMA-IR | |||||
| (n=22) | ||||||
| Derosa i wsp. | 2013 | Pacjenci z nadwagą | Berberol® 2x/d | 3 | ↓ stężenia insuliny na czczo | [35] |
| i dyslipidemią o nis- | miesiące | ↓ HOMA-IR | ||||
| kim ryzyku sercowo- | Placebo | ↓ stężenia rezystyny i RBP-4 | ||||
| naczyniowym | ↑ stężenia adiponektyny | |||||
| Di Pierro i wsp. | 2015 | Pacjenci z T2D i | Berberol® 2x/d (n=15) | 12 | ↓ stężenia glukozy na czczo | [36] |
| hipercholesterolemią | miesięcy | ↓ HbA1c | ||||
| nietolerujący statyn | Berberol® + statyna 2x/d (n=15) | |||||
| Berberol® + ezetymib 2x/d (n=15) | ||||||
| Guarino i wsp. | 2017 | Pacjenci z MS | Berberol® 2x/d (n=68) | 52 ty-godnie | ↓ HOMA-IR | [37] |
| ↓ obwodu talii | ||||||
| Placebo 2x/d (n=68) | ↓ %TF | |||||
| ↓ %VF | ||||||
| ↓ HbA1c | ||||||
AUC – pole pod krzywą (area under the curve), BBR – berberyna (berberine), BMI – wskaźnik masy ciała (body mass index), CRP – białko C-reaktywne (C-reactive protein), HbA1c – hemoglobina glikowana A1c (glycated hemoglobin, hemoglobin A1c), hs-CRP – wysokoczułe CRP (high-sensitivity CRP), IFG – nieprawidłowa glikemia na czczo (impaired fasting glucose), IL – interleukina (interleukin), LPS – lipopolisacharyd (lipopolysaccharides), MET – metformina (metformin), MS – zespół metaboliczny (metabolic syndrome), RBP-4 – białko wiążące retinol typu 4 (retinol-binding protein 4), T2D – cukrzyca typu 2 (type 2 diabetes), TF – całkowita zawartość tłuszczu (total fat), TG – triglicerydy (triglycerides), TNF-α – czynnik martwicy nowotworu (tumor necrosis factor), VF – tłuszcz trzewny (visceral fat), WZW – wirusowe zapalenie wątroby (viral hepatitis)
Suplementacja BBR może poprawiać wrażliwość na insulinę przez hamowanie magazynowania tłuszczu i modyfikację profilu adipocytokin w ludzkich preadipocytach u pacjentów z zespołem metabolicznym (metabolic syndrome, MS) [22]. Podawanie BBR, w porównaniu z placebo, prowadziło do remisji zespołu metabolicznego oraz wzrostu wrażliwości na insulinę w wyniku zmniejszenia: obwodu talii, skurczowego ciśnienia krwi, triglicerydów i całkowitego wydzielania insuliny [28]. Nowe dane naukowe wskazują na istotny udział mikrobioty jelitowej w rozwoju T2D. Tezę tę potwierdzają Chen i wsp., którzy wykazali poprawę parametrów gospodarki węglowodanowej i lipidowej w wyniku modulacji Bifidobacterium, TNF-α i LPS po zastosowaniu 8-tygodniowej suplementacji BBR u pacjentów z T2D [29]. W porównaniu z MET, BBR skuteczniej obniżała poziom metyloglikosalu, będącego zaawansowanym produktem glikacji, w surowicy i IR przez lepszą kontrolę glikemii u nowo zdiagnozowanych pacjentów z T2D [30]. Badanie Sheng i Xie wykazało znaczące korzyści zdrowotne z dołączenia suplementacji BBR do tradycyjnej farmakoterapii T2D obejmującej MET i glipizyd. U pacjentów zaobserwowano redukcję: stężenia glukozy na czczo, insulinooporności, TNF-α, interleukiny-6 oraz białka C-reaktywnego [31]. Natomiast Zhang i wsp. dowiedli, że skuteczność BBR w obniżaniu m.in. stężenia glukozy na czczo oraz poziomu hemoglobiny glikowanej była podobna do skuteczności MET i rozyglitazonu w T2D. Zaobserwowano również poprawę parametrów metabolicznych u pacjentów z T2D, nieprawidłową glikemią na czczo oraz wirusowym zapaleniem wątroby typu B i C [4]. Natomiast w innym badaniu porównującym suplementację BBR z tradycyjną farmakoterapią MS stwierdzono, że BBR skuteczniej reguluje poziom glukozy i lipidów we krwi, poprawia IR oraz zmniejsza poziom odpowiedzi zapalnych w organizmie u pacjentów z MS [32]. Trzymiesięczna codzienna podaż 3 g wyciągu z owoców B. vulgaris może korzystnie wpływać na parametry gospodarki lipidowej, węglowodanowej oraz całkowitą pojemność antyoksydacyjną u pacjentów z T2D [33]. Natomiast sześciomiesięczna suplementacja preparatem Berberol®, zawierającym ekstrakt z B. aristata oraz S. marianum, miała pozytywny wpływ na parametry glikemiczne i lipidowe u osób chorujących na T2D [34]. Skuteczność tego preparatu nutraceutycznego w poprawie parametrów metabolicznych, w tym m.in. IR, zbadano kilkukrotnie [35, 36, 37].
Metaanaliza i przegląd systemowy dziewięciu randomizowanych badań kontrolnych wykazała obiecującą rolę BBR u pacjentek z zespołem policystycznych jajników z insulinoopornością. Nie stwierdzono jednak istotnej różnicy między BBR a MET w łagodzeniu IR, poprawie metabolizmu węglowodanów i lipidów oraz zaburzeniach układu rozrodczego. MET w połączeniu z BBR nie wykazała lepszych wyników niż sama MET. Konieczne są dalsze bardziej szczegółowe badania w celu potwierdzenia działania i bezpieczeństwa BBR w przebiegu zespołu policystycznych jajników z insulinoopornością [38].
Na podstawie wyników licznych badań in vitro i in vivo wydaje się, że BBR może potencjalnie doskonale uzupełniać leczenie niefarmakologiczne IR czy T2D. Jednak dotychczasowe badania prowadzono głównie in vitro lub na modelu zwierzęcym, a ich stopień wiarygodności jest niski. Wobec tego potrzebne są dobrze zaprojektowane, wieloośrodkowe randomizowane badania kliniczne, w celu ocenienia wpływu BBR na gospodarkę węglowodanową, ustalenia dawki terapeutycznej oraz potencjalnych działań niepożądanych.