Have a personal or library account? Click to login
Usefulness Of Microbial Cytotoxins In The Diagnosis Of Selected Bacterial Infections Cover

Usefulness Of Microbial Cytotoxins In The Diagnosis Of Selected Bacterial Infections

Open Access
|Sep 2021

Figures & Tables

Ryc. 1.

Schematyczne przedstawienie testu CAMPPrzedstawiono wynik dodatni (S. agalactiae) i wyniki ujemne (S. pyogenes oraz S. pneumoniae).
Schematyczne przedstawienie testu CAMPPrzedstawiono wynik dodatni (S. agalactiae) i wyniki ujemne (S. pyogenes oraz S. pneumoniae).

Ryc. 2.

Wyniki testu CAMP stosowanego w identyfikacji S. agalactiaeTest na podłożu z 10% dodatkiem odwłóknionej krwi ludzkiej (1), owczej (2) oraz końskiej (3) z zastosowaniem szczepu S. aureus (A) oraz szczepu S. agalactiae (a), który posiewano prostopadle do posiewu S. aureus w różnych odległościach (a’, a’’, a’’’). Inkubację prowadzono w temperaturze 37°C przez 24 godziny w warunkach tlenowych [16].
Wyniki testu CAMP stosowanego w identyfikacji S. agalactiaeTest na podłożu z 10% dodatkiem odwłóknionej krwi ludzkiej (1), owczej (2) oraz końskiej (3) z zastosowaniem szczepu S. aureus (A) oraz szczepu S. agalactiae (a), który posiewano prostopadle do posiewu S. aureus w różnych odległościach (a’, a’’, a’’’). Inkubację prowadzono w temperaturze 37°C przez 24 godziny w warunkach tlenowych [16].

Ryc. 3.

Wyniki testu CAMP stosowanego do identyfikacji S. agalactiaeTest na podłożu z 10% dodatkiem odwłóknionej krwi ludzkiej z zastosowaniem szczepu testowego S. aureus (A) oraz 5 szczepów klinicznych S. agalactiae (a, b, c, d, e), które posiewano w różnych odległościach: (a’, b’, c’, d’, e’ = 1 mm, a’’, b’’, c’’, d’’, e’’ = 2 mm, a’’’, b’’’, c’’’, d’’’, e’’’ = 4–5 mm). Inkubację prowadzono przez 18 godzin w temperaturze 37°C w warunkach tlenowych [16].
Wyniki testu CAMP stosowanego do identyfikacji S. agalactiaeTest na podłożu z 10% dodatkiem odwłóknionej krwi ludzkiej z zastosowaniem szczepu testowego S. aureus (A) oraz 5 szczepów klinicznych S. agalactiae (a, b, c, d, e), które posiewano w różnych odległościach: (a’, b’, c’, d’, e’ = 1 mm, a’’, b’’, c’’, d’’, e’’ = 2 mm, a’’’, b’’’, c’’’, d’’’, e’’’ = 4–5 mm). Inkubację prowadzono przez 18 godzin w temperaturze 37°C w warunkach tlenowych [16].

Ryc. 4.

Odwrócony test CAMPSchemat wykonania (1) oraz wyniki (2–5) uzyskane w odwróconym teście CAMP dla szczepów S. agalactiae (A, B) oraz C. perfringens (a, b) wysiewanych w różnych odległościach (a’, b’ = 1–2 mm, a’’ b’’ = 3–4 mm, a’’’, b’’’ = 5 mm), na podłoża agarowe z 5% dodatkiem krwi owczej ( 2, 3), końskiej (4) oraz ludzkiej (5). Inkubację prowadzono w temperaturze 37°C przez 24 godziny w warunkach beztlenowych. Wynik dodatni w kształcie sierpu (szara strzałka), wynik ujemny (biała strzałka) [16].
Odwrócony test CAMPSchemat wykonania (1) oraz wyniki (2–5) uzyskane w odwróconym teście CAMP dla szczepów S. agalactiae (A, B) oraz C. perfringens (a, b) wysiewanych w różnych odległościach (a’, b’ = 1–2 mm, a’’ b’’ = 3–4 mm, a’’’, b’’’ = 5 mm), na podłoża agarowe z 5% dodatkiem krwi owczej ( 2, 3), końskiej (4) oraz ludzkiej (5). Inkubację prowadzono w temperaturze 37°C przez 24 godziny w warunkach beztlenowych. Wynik dodatni w kształcie sierpu (szara strzałka), wynik ujemny (biała strzałka) [16].

Ryc. 5.

Test CAMP do różnicowania gatunków z rodzaju ListeriaRóżnicowanie gatunków Listeria sp. (1). Wyniki uzyskane dla gatunków L. monocytogenes (a), L. ivanovii (b), L. innocua (c), wysiewanych w różnych odległościach: a’, b’, c’ = 1–2 mm, a’’, b’’, c’’ = 5–7 mm od posiewów R. equi (A) i S. aureus (B) na podłoża agarowe z 5% dodatkiem krwi ludzkiej (2), owczej (3) oraz końskiej (4). Inkubacje prowadzono w temperaturze 37°C przez 24 godziny w warunkach tlenowych [16].
Test CAMP do różnicowania gatunków z rodzaju ListeriaRóżnicowanie gatunków Listeria sp. (1). Wyniki uzyskane dla gatunków L. monocytogenes (a), L. ivanovii (b), L. innocua (c), wysiewanych w różnych odległościach: a’, b’, c’ = 1–2 mm, a’’, b’’, c’’ = 5–7 mm od posiewów R. equi (A) i S. aureus (B) na podłoża agarowe z 5% dodatkiem krwi ludzkiej (2), owczej (3) oraz końskiej (4). Inkubacje prowadzono w temperaturze 37°C przez 24 godziny w warunkach tlenowych [16].

Klasyfikacja egzotoskyn w oparciu o typ komórek, na które działają

Rodzaj toksynyMiejsce działaniaPrzykład toksyn
Neurotoksynaukład nerwowytoksyna botulinowa, toksyna tężcowa
Enterotoksynanabłonek jelitowytoksyna choleryczna, toksyna ciepłostabilna
Leukotoksynakomórki fagocytującehemolizyny gronkowcowe
Hepatotoksynahepatocytytoksyny sinicowe
Hemolizynaerytrocytyhemolizyna α
Cytotoksynaróżne rodzaje komórektoksyna A Pseudomonas aeruginosa

Wpływ rodzaju erytrocytów na wyniki uzyskiwane w teście CAMP  i odwróconym teście CAMP

Rodzaj testuPochodzenie erytrocytów
SBGBPB
Test CAMP+++
Odwrócony test CAMP+++

Zestawienie zalecanych erytrocytów wykorzystywanych w teście CAMP i jego modyfikacjach

Nazwa testuZalecane krwinki czerwone według literaturyWybrany rodzaj krwinek czerwonych na podstawie uzyskanych wyników
Test CAMPerytrocyty owczeerytrocyty ludzkie
Odwrócony test CAMPerytrocyty owczeerytrocyty owcze
Test CAMP do identyfikacji gatunków Listeria sp.erytrocyty owcze oraz końskieerytrocyty ludzkie
DOI: https://doi.org/10.21307/PM-2021.60.3.17 | Journal eISSN: 2545-3149 | Journal ISSN: 0079-4252
Language: English, Polish
Page range: 211 - 222
Submitted on: Jan 1, 2021
Accepted on: Jun 1, 2021
Published on: Sep 23, 2021
Published by: Polish Society of Microbiologists
In partnership with: Paradigm Publishing Services
Publication frequency: 4 issues per year

© 2021 Magdalena Godkowicz, Karolina Rudnicka, published by Polish Society of Microbiologists
This work is licensed under the Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 License.